Get Adobe Flash player

ІМУНОМОРФОЛОГІЧНА ТА МОРФОМЕТРИЧНА ХАРАКТЕРИСТИКА ЦЕНТРАЛЬНИХ І ПЕРИФЕРИЧНИХ ОРГАНІВ ІМУНОГЕНЕЗУ МИШЕЙ ПРИ УВЕДЕННІ ПУТРЕСЦИНА ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИМ ТВАРИНАМ

Автор: Зілфян А. В., Авагян С. А.

Сторінки: 300-307

Анотація

         

Ми дослідили вплив екзогенно введеного путресцина на морфофункціональний стан центральних та периферичних органів експериментальних тварин. Білим мишам було зроблено однократне внутрішньовенне введення путресцина (Сігма, США) концентрацією 10-9мг/мл на 100 г маси тіла тварини. Через 2 та 8 год після введення путресцина, тваринам проводили евтаназію дотримуючись усіх положень Протоколу про дослідження з використанням експериментальних тварин, затверджених Комітетом по біоетиці Єреванського державного медичного університету.

Структурні зміни, або так звана «акцидентальна (випадкова) інволюція», спостерігалися в корковому шарі тимуса експериментальних тварин через 8 год після введення путресцину. Ми помітили структурні зміни у селезінці та лімфатичних вузлах, що проявлялися у вигляді активації В-залежних зон та шарів. Проведені імуноморфологічні дослідження показали, що активація В-залежних зон характеризується помітним збільшенням кількості В-лімфоцитів, які містять імуноглобулін G, а також збільшенням вмісту інтерлейкіну IL-1α в цих клітинах. Не виключено, що путресцин у селезінці та лімфатичних вузлах навіть у досить малих концентраціях (подібних до тих, що були визначені у сиворотці крові інтактних ссавців) активує імуномодуляцію, а також вибірково активує популяцію В-лімфоцитів, які, врешті решт, відповідають за активацію реакцій гуморального імунітету. 

Ключові слова: путресцин, органи імуногенезу, структурні зміни, В-лімфоцити, інтерлейкін 1 α, імуномодуляція.

namj@mail.ru

Список літератури

  1. Avagyan SA, Zilfyan AV, Yeramyan DG, Nersisyan SS, Avagyan TS. Role of putrescine in processes of increased heart contractile activity formation (Experimental Research: First Communication). The New Armenian Medical Journal. 2008;2(3):83–102.
  2. Bagdade JD, Subbaiah PV, Bartos D, Bartos F, Campbell RA. Polyamines: an unrecognized cardiovascular risk factor in chronic dialysis? Lancet. 1979;13(8113):412–413.
  3. Hakovirta H, Keiski A, Toppari J, Halmekyto M, Alhonen L, Janne J, Parvinen M. Polyamines and regulation of spermatogenesis: selective stimulation of late spermatogonia in transgenic mice overexpressing the human ornithine decarboxylase gene. Mol Endocrinol. 1993;7(11):1430–1436.
  4. Manni A., Badger B, Glikman P, Bartholomew M, Santner S, Demers L. Individual and combined effects of a-difluoromethylornithine and ovariectomy on the growth and polyamine milieu of experimental breast cancer in rats. Cancer Res. 1989;49(13):3529–3534.
  5. Nesher G, Moore TL, Dorner RW. In vitro effects of methotrexate on peripheral blood monocytes: modulation by folinic acid and S-adenosylmethionine. Ann Rheum Dis. 1991;50(9):637–641.
  6. Corona-de-la-Pena N, Uribe-Carvajal S, Barrientos-Rios R, Matias-Aguilar L, Montiel-Manzano G, Majluf-Cruz A. Polyamines inhibit both platelet aggregation and glycoprotein IIb/IIIa activation. J Cardiovasc Pharmacol. 2005;46(2):216–21.
  7. Schipper RG, Penning LC, Verhofstad AAJ. Involvement of polyamines in apoptosis. Facts and controversies: effectors or protectors? Semin Cancer Biol. 2000;10(1):55–68.
  8. Seiler N, Raul F. Polyamines and apoptosis. J Cell Mol Med. 2005;9(3):623–642.
  9. Sjoholm A, Arkhammar P, Berggren PO, Andersson A. Polyamines in pancreatic islets of obese-hyperglycemic (ob/ob) mice of different ages. Am J Physiol Cell Physiol. 2001;280(2):C317–23.
  10. Soulet D, Rivest S. Polyamines play a critical role in the control of the innate immune response in the mouse central nervous system. J Cell Biol. 2003;162(2):257–268.
  11. Yu H, Yoo PK, Aguirre CC, Tsoa RW, Kern RM, Grody WW, Cederbaum SD, Iyer RK. Widespread expression of arginase I in mouse tissues. Biochemical and physiological implications. J Histochem Cytochem. 2003;51(9):1151–1160.