Get Adobe Flash player

ЗМІНИ ВМІСТУ ІНТЕРЛЕЙКІНІВ IL-1 α, IL-2, IL-6, γ-ІНТЕРФЕРОНУ, ПРОЛАКТИНУ ТА ІНСУЛІНОПОДІБНОГО ФАКТОРУ РОСТУ В ОРГАНАХ ІМУНОГЕНЕЗУ ПРИ ВВЕДЕННІ ПУТРЕСЦИНУ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИМ ТВАРИНАМ

Автор: Зілфян А. В., Авагян С. А.

Сторінки: 323-330

Анотація

         

Ми використали метод твердофазового імуноферментного аналізу (ELISA) для вивчення змін вмісту імуноцитокінів, пролактину та інсуліноподібного фактору росту в центральних та периферичних органах імуногенезу мишей.

Було зроблено однократне внутрішньовенне введення путресцину в малій дозі, подібній до тієї, що була визначена в сиворотці крові лабораторних тварин (щурів та мишей). Під наркозом (препарат нембутал) тваринам робили декапітацію дотримуючись норм про дослідження з використанням лабораторних тварин, затверджених Єреванським державним медичним університетом.

Зміни, відмічені в тимусі експериментальних тварин, вказують на путресцин-залежний імунопригнічуючий ефект, який направлений на вибіркове уповільнення синтезу IL-2, IL-6 та γ-IFN в центральних органах імунної системи. Високі показники вмісту IL-1a, IL-6 та пролактину були визначені у селезінці та лімфатичних вузлах експериментальних тварин через 8 год після введення путресцину. Не виключено, що в умовах нашого експерименту високий рівень IL-6 в селезінці та лімфатичних вузлах був обумовлений стимулюючим ефектом на популяцію     В-лімфоцитів (відносно високий вмістом пролактину викликав цей ефект). Крім цього, в літературі представлені дані про схожий механізм прямої стимуляції пролактином В-лімфоцитів, а саме синтез IL-1a В-лімфоцитами.

Відомо, що посилений синтез γ-IFN в імунокомпетентних клітинах супроводжується помітною активацією специфічних субпопуляцій Т-лімфоцитів: Т-супресорів та Т-кілерів, які мають цитотоксичну активність. Тому, ми можемо припустити, що путресцин, який ми ввели тваринам екзогенно в малих концентраціях, прямо та/чи опосередковано пригнічує цитотоксичну активність субпопуляцій Т-лімфоцитів.

Ключові слова: путресцин, органи імуногенезу, В-лімфоцити, імуноцитокіни, пролактин, імуномодуляція.

namj@mail.ru

Список літератури

 

  1. Berczi I, Nagy E, Kovacs K, Horvath E. Regulation of humoral immunity in rats by pituitary hormones. Acta Endocrinol (Copenh). 1981;98(4):506–13.
  2. Bowlin TL, McKown BJ, Babcock GF, Sunkara PS. Intracellular polyamine biosynthesis is required for interleukin 2 responsiveness during lymphocyte mitogenesis. Cell Immunol. 1987;106(2):260–72.
  3. Bowlin TL, McKown BJ, Sunkara PS. The effect of a-difluoromethylornthine an inhibitor of polyamine biosynthesis, on mitogen induced interleukin 2 production. Immunopharmacology. 1987;13(2):143–7.
  4. Byrd WJ, Jacbos DM, Amoss MS. Synthetic polyamines added to cultures containing bovine sera reversibly inhibit in vitro parameters of immunity. Nature. 1977;267(5612):621–3.
  5. Endo Y, Kikuchi T, Nakamura M. Ornithine and histidine decarboxylase activities in mice sensitized to endotoxin, interleukin-1 or tumour necrosis factor by D-galactosamine. Br J Pharmacol. 1992;107(3):888–94.
  6. Endo Y, Kikuchi T, Takeda Y, Nitta Y, Rikiishi H, Kumagai K. GM-CSF and G-CSF stimulate the synthesis of histamine and putrescine in the hematopoietic organs in vivo. Immunol Lett. 1992;33(1):9–13.
  7. Flescher E, Bowlin TL, Ballester A, Houk R, Talal N. Increased polyamines may downregulate interleukin 2 production in rheumatoid arthritis. J Clin Invest. 1989;83(4):1356–62.
  8. Flescher E, Bowlin TL, Talal N. Regulation of IL-2 production by mononuclear cells from rheumatoid arthritis synovial fluids. Clin Exp Immunol. 1992;87(3):435–7.
  9. Flescher E, Bowlin TL, Talal N. Polyamine oxidation down-regulates interleukin-2 production by human peripheral blood mononuclear cells. J Immunol. 1989;142(3):907–12.
  10. Flescher E, Ledbetter JA, Schieven GL, Vela-Roch N, Fossum D, Dang H, Ogawa N, Talal N. Longitudinal exposure of human T lymphocytes to weak oxidative stress suppresses transmembrane and nuclear signal transduction. J Immunol. 1994;153(11):4880–9.
  11. Lahat N, Miller A, Shtiller R, Touby E. Differential effects of prolactin upon activation and differentiation of human B lymphocytes. J Neuroimmunol. 1993;47(1):35–40.
  12. McMurray R, Keisler D, Kanuckel K, Izui S, Walker SE. Prolactin influences autoimmune disease activity in the female B/W mouse. J Immunol. 1991;147(11):3780–7.
  13. Stefanelli C, Carati D, Rossoni C, Flamigni F, Caldarera CM. Accumulation of N1-acetylspermidine in heart and spleen of isoprenaline-treated rats. Biochem J. 1986;237(3):931–4.
  14. Stefanelli C, Flamigni F, Carati D, Rossoni C, Caldarera CM. Effects of dexamethasone on spermidine N1-acetyltransferase and ornithine activities in rat spleen. Biochim Biophys Acta. 1987;930(1):79–86.
  15. Til HP, Falke HE, Prinsen MK, Willems MI. Acute and subacute toxicity of tyramine, spermidine, spermine, putrescine and cadaverine in rats. Food Chem Toxicol. 1997;35(3–4):337–348.