Get Adobe Flash player

ВПЛИВ КСЕНОГЕННОЇ ЦЕРЕБРОСПІНАЛЬНОЇ РІДИНИ НА ЛЕГЕНІ ПАЦЮКІВ, ЯКІ ОТРИМУВАЛИ ІТРАКОНАЗОЛ

Автор: Д. В. Шатов

Сторінки: 564-573

Анотація

Мета. Вивчення морфологічних особливостей легень пацюків лінії Вістар, які отримували ітраконазол, та при корекції ксеногенної цереброспінальної рідини, а також з’ясувати факт та ступінь впливу контрольованих факторів впливу, статевої належності та їх взаємодії на результуючі ознаки морфометрії паренхіми легень.

Матеріали та методи. Дослідження проведене на 30 пацюках лінії Вістар, які були розподілені на такі групи: група плацебо, група ітраконазолу та плацебо, група ітраконазолу та ксеногенної цереброспінальної рідини. Тварини були розподілені на підгрупи за статевою ознакою. Паренхіму легень вивчали за допомогою гістологічного, гістоморфометричного, статистичного методів.

Результати. Уведення ітраконазолу пацюкам лінії Вістар призводило до збільшення відсоткового вмісту емфізематозних ділянок за рахунок зниження відсоткового вмісту незміненої паренхіми. Ці зміни були більш виражені в самок. Уведення ксеногенної цереброспінальної рідини самкам приводило до збільшення відсоткового вмісту незміненої паренхіми за рахунок зменшення відсоткового вмісту ділянок емфіземи. При введенні ксеногенної цереброспінальної рідини самцям, які отримували ітраконазол, відмічали збільшення відсоткового вмісту емфізематозно-змінених ділянок за рахунок зниження відсоткового вмісту незміненої паренхіми, що також супроводжувалося більш вираженою появою колагену.

Висновок. Уведення ітраконазолу пацюкам призводило до деструктивних змін, що були більш виражені в самок. Ксеногенна цереброспінальна рідина у самок мала захисний ефект, а у самців викликала погіршення гістологічної картини.

Ключові слова: ітраконазол, цереброспінальна рідина, паренхіма легень, корекція, морфометрія.

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Список літератури

  1. Pandya NA, Atra AA, Riley U, Pinkerton CR. Role of itraconazole in haematology/oncology. Arch Dis Child. 2003;88:258–260.
  2. Aftab BT, Dobromilskaya I, Liu Jun O, Rudin ChM. Itraconazole inhibits angiogenesis and tumor growth in non-small cell lung cancer. Cancer Res. 2011;71(21):6764–6772. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-11-0691.
  3. Antonarakis ES., Heath EI., Smith DC et al. Repurposing itraconazole as a treatment for advanced prostate cancer: a noncomparative randomized phase II trial in men with metastatic castration-resistant prostate cancer. Oncologist. 2013;18(2):163–173.
  4. Tuccori M, Bresci F, Guidi Bet al. Fatal hepatitis after long-term pulse itraconazole treatment for onychomycosis.Pharmacother. 2008;42(7):1112-1117. doi: 10.1345/aph.1L051.
  5. Okuyan H, Altın C. Heart failure induced by itraconazole. Indian J Pharmacol. 2013; 45(5):524–525. doi:  10.4103/0253-7613.117751.
  6. Ershova ON, Karpenko LYu. [Pharmacological correction of hyperadrenocorticism in dogs]. Veterinarnaya klinika. 2008;12:15–16.
  7. Main KM., Skov M, Sillesen IB et al. Cushing's syndrome due to pharmacological interaction in a cystic fibrosis patient. Acta Paediatr. 2002;91(9):1008–1011.
  8. Akira M, Ishikawa H, Yamamoto S. Drug-induced pneumonitis: thin-section CT findings in 60 patients. Radiology. 2002;224(3):852–860.
  9. Tobón AM, Agudelo CA, Osorio ML et al. Residual pulmonary abnormalities in adult patients with chronic paracoccidioidomycosis: prolonged follow-up after itraconazole therapy. Clinical Infectious Diseases. 2003;37:898–904.
  10. Pikalyuk VS, Kiselyov VV, Shaymardanova LR. [Correctional effect of xenogenic cerebrospinal fluid after its parenteral introdution to white rats in experimental hypocorticism]. Svit meditsini ta bioligii. 2013;2:71–74.
  11. Likvor kak gumoralnaia sreda organizma [CSF as humoral environment of the body] / Pod red. VS Pikaliuka. – Simferopol: Publ. «Arial», 2010. – 192 p.
  12. Westphal M, Rehberg S, Maybauer MO et al. Cardiopulmonary effects of low-dose arginine vasopressin in ovine acute lung injury. Crit Care Med. 2011;39(2):357–363.
  13. Bozkurt A, Ghandour S, Okboy N et al. Inflammatory response to cold injury in remote organs is reduced by corticotropin-releasing factor. Regul Pept. 2001;99(2-3):131–139.
  14. Egger C, Gérard C, Vidotto N et al. Lung volume quantified by MRI reflects extracellular-matrix deposition and altered pulmonary function in bleomycin models of fibrosis: effects of SOM230. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2014;306(12):1064-1077.
  15. Yu XM, Liu XM, Qi YF et al. [Alterations of intermedin and its receptor system in oleic acid-induced acute lung injury of rats]. Beijing Da Xue Xue Bao. 2006;38(5):496-500. [Article in Chinese].
  16. Zhong M, Xue Z, Cang J et al. Protective effect of melatonin on reexpansion pulmonary  edema in rats model. Chin Med J. 2013;126(3):500-504.
  17. Liu Y, Guo R, Wang F. [Protective effect of ghrelin against paraquat-induced acute lung injury in mice]. Zhonghua lao dong wei sheng zhi ye bing za zhi. 2014;32(3):190-194. [Article in Chinese].
  18. Lee Ye-Ji, Moon C, Lee SH. Apoptotic cell instillation after bleomycin attenuates lung injury through hepatocyte growth factor induction. Eur Respir J. 2012;40(2):424-435.  doi: 10.1183/09031936.00096711.
  19. Yang B,  Huang W,  Han J. Study of the role of epidermal growth factor on lung fluid transport in rabbits with acute lung injury caused by endotoxin. Experimental and therapeutic medicine. 2012;4:611-614. doi: 10.3892/etm.2012.670.
  20. Oktar GL, Kirisci M, Dursun AD et al. Antioxidative effects of adrenomedullin and vascular endothelial growth factor on lung injury induced by skeletal muscle ischemia-reperfusion. Bratis Lek Listy. 2013;114(11):625-628.
  21. Sigounas G, Salleng KJ, Mehlhop PD et al. Erythropoietin ameliorates chemotherapy-induced brosis of the lungs in a preclinical murine model. Int. J. Cancer. 2008;122:2851–2857.
  22.  Pikalyuk VS, Tkach VV, Kriventsov MA, Shaymardanova LR, Bessalova YeYu, Kisel`ov VV, Zayviy YuP, Leskovskiy AO. Sposib otpymannya biologichnogo preparatu likvoru [The method of producing native biological preparation of liquor]. Ukraine patent, no 65154, 2011.
  23. Korjevskiy DE, Giliarov AV. Osnovi gistologicheskoy tehniki [Basis of histological techniques]. SanktPeterburg: SpetsLitPubl, 2010, 95 p.
  24. Westlind-Johnsson A. Comparative analysis of CYP3A expression in human liver suggests only a minor role for CYP3A5 in drug metabolism. Drug Metab Dispos. 2003;31(6):755–761. doi:10.1124/dmd.31.6.755.
  25. Anttila S, Hukkanen J, Hakkola J et al. Expression and localization of CYP3A4 and CYP3A5 in human lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 1997;16(3):242-249. PMID: 9070608.
  26. Courcot E, Leclerc J, Lafitte JJ. Xenobiotic metabolism and disposition in human lung cell models: comparison with in vivo expression profiles. Drug Metab Dispos. 2012;40(10):1953–1965. doi:10.1124/dmd.112.046896.
  27. Lacroix D, Sonnier M, Moncion A. Expression of CYP3A in the human liver - evidence that the shift between CYP3A7 and CYP3A4 occurs immediately after birth. Eur J Biochem. 1997;247(2):625–634. doi:10.1111/j.1432-1033.1997.00625.x.
  28. Wijnen PA, Bekers O, Drent M. Relationship between drug-induced interstitial lung diseases and cytochrome P450 polymorphisms. Curr Opin Pulm Med. 2010;16(5):496-502. doi: 10.1097/MCP.0b013e32833c06f1. PMID: 20592596.
  29. Gharaee-Kermani M, Hatano K, Nozaki Ya et al. Gender-based differences in bleomycin-induced pulmonary fibrosis. Am J Pathol. 2005;166(6):1593–1606. doi:  10.1016/S0002-9440(10)62470-4. – PMCID: PMC1602429.
  30. Taniuchi S, Fujishima F, Miki Y et al. Tissue concentrations of estrogens and aromatase immunolocalization in interstitial pneumonia of human lung. Mol Cell Endocrinol. 2014. pii: S0303-7207(14)00165-8. doi: 10.1016/j.mce.2014.05.016.
  31. Ninomiya F, Yokohira M, Kishi S et al. Gender-dependent effects of gonadectomy on lung carcinogenesis by 4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanone (NNK) in female and male A/J mice. Oncol Rep. 2013;30(6):2632–2638. doi:  10.3892/or.2013.2759.
  32. Keith RC, Sokolove J, Edelman BL et al. Testosterone is protective in the sexually dimorphic development of arthritis and lung disease in SKG mice. Arthritis Rheum. 2013;65(6):1487–1493. doi:  10.1002/art.37943.
  33. Atlantis E, Fahey P, Cochrane B et al. Endogenous testosterone level and testosterone supplementation therapy in chronic obstructive pulmonary disease (COPD): a systematic review and meta-analysis. BMJ Open. 2013;3(8):e003127. doi:  10.1136/bmjopen-2013-003127.
  34. Xu L, Xiang X, Ji X et al. Effects and mechanism of dehydroepiandrosterone on epithelial-mesenchymal transition in bronchial epithelial cells. Exp Lung Res. 2014;40(5):211-221. doi: 10.3109/01902148.2013.879966.
  35. Bessalova YeYu, Pikalyuk VS, Korolev VA. [Biological effects of cerebrospinal fluid on  mammal’s reproductive system].   БессаловаЕ.Ю. Биологическиеэффектыцереброспинальнойжидкостинарепродуктивнуюсистемукрыс / Е.Ю. Бессалова, В.С. Пикалюк, В.А. Королёв // Journal of Clinical and Experimental Medical Research. 2013;1(1):26-55.